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AMCRA est un centre de connaissances concernant l’utilisation des antibiotiques vétérinaires. L’objectif est de prévenir la résistance aux antibiotiques afin de protéger la santé publique, la santé animale et le bien-être animal. L’AMCRA est composée d’organisations gouvernementales concernées, de représentants de l’industrie pharmaceutique et animale, d’organisations agricoles et vétérinaires. En plus de recueillir et d’analyser des données sur l’utilisation et la résistance des antibiotiques chez les animaux, l’AMCRA organise des campagnes de sensibilisation et donne des conseils pratiques et des lignes directrices sur l’utilisation des antibiotiques vétérinaires.
Les directives tiennent compte de l’importance clinique et la gravité d’une infection bactérienne chez l’animal d’une part et l’importance de l’efficacité d’un antibiotique ou d’une classe d’antibiotiques pour l’utilisation humaine telle que définie par l’Organisation mondiale de la santé (WHO), d’autre part, et, bien sûr, du système de cascade et du cadre juridique en Belgique pour l’utilisation de médicaments chez les animaux producteurs de denrées alimentaires. L’objectif de directives pour les traitements antibactériens est d’encourager une utilisation responsable et avisée des antibiotiques, afin de lutter contre la sélection et la diffusion des résistances antibactériennes. Le vétérinaire est et restera personnellement responsable de la décision d’administrer ou non des antibiotiques, et du choix du produit si une thérapie antibactérienne s’impose.
Codes de couleur AMCRA
Afin d’encourager une utilisation responsable et avisée des antibiotiques, afin de lutter contre la sélection et la diffusion des résistances antibactériennes, l’AMCRA a établi des directives
Le vade-mecum de l’AMCRA répertorie les thérapie antimicrobiennes les plus responsables priorisées par code couleur par espèce et par indication. Le code de couleur, à son tour, est basé sur l’importance de la molécule dans la médecine humaine selon l’Organisation mondiale de la santé (WHO) et fixe les préférences et les conditions suivantes.
Code couleur | Examen de labo supplémentaire (1)(2) | Test de susceptibilité antibactérienne (1)(2) | Classification WHO |
---|---|---|---|
Jaune | Par préférence | Par préférence | Important antimicrobials |
Orange | Condition | Par préférence | Highly important antimicrobials |
Rouge | Condition | Condition | Critically important antimicrobials (3) |
(1) Échantillon prélevé avant le début de la thérapie
(2) Si un examen de laboratoire complémentaire et un test de susceptibilité aux antibiotiques sont impossibles ou ne sont pas immédiatement disponibles, il faut justifier le choix thérapeutique du traitement antibactérien, en se basant soit sur des données de la littérature scientifique, soit des données historiques, datant de moins d’un an, relatives aux résultats d’examens de laboratoire complémentaire et/ou des résultats de tests de susceptibilité aux antibiotiques, soit des résultats cliniques. Et à condition que l’activité des antibiotiques jaunes ou oranges ne soit incontestable.
(3) Il s’agit notamment des quinolones et des céphalosporines de troisième, quatrième et cinquième générations à activité systémique. Ces médicaments font partie des classes d’antibiotiques les plus critiques pour la santé publique et doivent donc être administrés avec la plus grande retenue en médecine vétérinaire.
La valeur Ct est un paramètre technique de RT-qPCR (réaction en chaîne de polymérase quantique en temps réel) qui correspond au nombre de cycles d’amplification requis avant que l’échantillon soit évalué positivement.
Pour mieux comprendre cela, vous devez d’abord savoir ce qu’est RT-qPCR et quelle est la différence avec la PCR conventionnelle.
Les deux techniques utilisent des primers qui détectent un morceau de code génétique caractéristique de ce que l’on recherche dans l’échantillon. La différence avec RT-qPCR est l’utilisation supplémentaire d’une sonde (probe) fluorescente. Cette sonde, également caractéristique pour le code recherché, se lie un peu loin des primers.
La pièce manquante entre les primers et la sonde est complétée par la polymérase Taq. Au moment où la chaîne est entièrement copiée, la sonde libère son label fluorescente.
À la fin du cycle, une copie est produite qui est utilisée ensemble avec l’original dans le cycle suivant pour les copier à nouveau. Comme le nombre de copies double au cours de cycles successifs, la fluorescence augmente de façon exponentielle.
Cependant, à mesure que les cycles progressent, les réactifs sont épuisés et constituent un facteur limitant pour l’augmentation exponentielle, l’augmentation de la fluorescence ralentit et cela de plus en plus rapide.
R&ndy l’explique aussi en détail dans ce film.
Oui. Au fil du temps, le paramètre a reçu de nombreux noms
- Ct: threshold cycle
- Cq: quantification cycle
- Cp: crossing point
- TOP: take-off point
À la fin de l’analyse, nous verrons une courbe de réaction en forme de S. La courbe réactive d’un contrôle positif est utilisée pour déterminer le point de départ de l’augmentation exponentielle. C’est ce qu’on appelle le threshold. Le cycle dans lequel un échantillon positif dépasse le threshold est la valeur Ct de l’échantillon.
Moins il faut de cycles pour dépasser le threshold, plus il y a de ce qui est recherché dans l’échantillon dès le départ. Un peu contre-intuitif, mais plus la valeur sera basse, plus l’échantillon sera considéré comme positif !
Bien qu’il soit présenté comme un monde numérique – positif/négatif, le morceau ADN/ARN est présent ou non – il n’est pas si numérique du tout. Il y a toujours du bruit en arrière-plan, c’est-à-dire qu’il y a toujours un signal (faible) qui n’a rien à voir avec ce qui est recherché. C’est le cas de toute technique de mesure, et avec la PCR, c’est le résultat d’une liaison non spécifique des primers et de la sonde.
Avec la PCR, ce phénomène n’est pas sans conséquence . Après tout, il s’agit d’une technique d’amplification, une méthode de mesure qui amplifie systématiquement le signal. Pas simplement amplifié, mais exponentiellement amplifié. Si on amplifie assez longtemps (augmenter le nombre de cycles), le signal de bruit dépassera le threshold et donc l’echantillon semblera positif.
C’est pourquoi nous nous arrêtons (par convention) à 40 cycles à quel moment l’echantillon est considéré comme négatif.
À partir de ce qui précède, nous avons appris que comparer les valeurs Ct entre laboratoires n’est pas possible. Alors peut-on comparer des patients avec la même maladie? Aussi difficile. Alors, un patient peut-il être suivi en utilisant la valeur Ct?
De nouveau, pas sans nuance.
Comme indiqué précédemment, le prélèvement est critique. Lorsque les valeurs Ct sont suivies dans le temps à l’aide d’échantillons prélevés par écouvillonnage, cette comparaison n’est pas évidente. C’est vrai, la durrée, la position, le profondeur d’echantillonage, … tout compte.
Dans le cas de sang, cela est beaucoup moins important. Nous pouvons supposer sans risque que le sang est un mélange assez homogène et que la méthode d’échantillonnage a beaucoup moins d’influence sur le résultat.
Il y a aussi un côté plus philosophique à l’attitude qu’on devrait adopter pendant la surveillance, et cela en général. La surveillance signifie avant tout “observation”. Une seule valeur aberrante en haut ou en bas doit être remarquée et vérifiée, mais sans tirer de conclusions prématurées et sans apporter automatiquement de changements au traitement. C’est la tendance au fil du temps sur de nombreux points de mesure qui indique d’où va-t-il aller, pas le dernier point de mesure et certainement pas si vous avez seulement deux.
Non.
Les maladies infectieuses sont des processus complexes dans lesquels des caractéristiques du pathogène jouent un rôle importent (type de germe, présence et activation des facteurs de virulence, et la dose d’infection) à côté des traits de son hôte(l’âge, l’immunité, des comorbidités, la prédisposition génétique,…lorsque tout ce qui précède a également une influence sur l’autre). Certains pathogènes conduisent presque toujours à la maladie, d’autres dans certaines circonstances, parfois seulement quelques particules sont suffisantes, parfois il faut de millions. Donc non, il est inutile de comparer des valeurs Ct entre des germes.
Qu’en est-il d’une maladie infectieuse particulière dont les caractéristiques et le rôle des facteurs hôtes sont plus ou moins connus (p. ex., la COVID chez les humains, l’herpès chez les chevaux, etc.)?
De nouveau, pour effectuer le point de comparaison tous les facteurs pouvant provoquer une variation de la valeur Ct en dehors du patient doivent être désactivés (même technique de prélèvement, même laboratoire, même méthode d’analyse, …). Deuxièmement, il faut également avoir une idée claire dustade du processus de la maladie. Il y aura très peu de particules infectieuses au début et à la fin d’une infection. Dans les deux cas, la valeur Ct peut être la même. De plus, un échantillon n’est représentatif que du moment où il est prélevé, quelques heures plus tard le résultat peut être différent.
Prétendre qu’un patient avec une valeur Ct élevée est moins contagieux qu’un patient avec une valeur faible n’est qu’une demi-vérité. Au moment du prélèvement, cela peut être vrai. Mais le lendemain, par exemple, ce n’est plus le cas.
Pour chaque fichier, des frais de gestion sont également ajoutés à la facture. Il s’agit de tous les coûts qui ne sont pas directement liés aux analyses. Il s’agit du traitement administratif, du ramassage, de la logistique et des frais d’expédition, …
Ce frais est facturé au maximum une fois par jour et par propriétaire. Si nous recevons plusieurs échantillons du même propriétaire en même temps, ce coût ne sera facturé qu’une seule fois.
Sur la page de votre rapport, vous pourrez également voir le prix de ces enquêtes. Ceci est juste pour votre information. Il n’est pas possible de régler ce solde en ligne. Une fois tous les examens terminés, la facture est préparée et envoyée par la poste.
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Zoolyx est un laboratoire de diagnostic vétérinaire. Les vétérinaires et les cabinets vétérinaires nous demandent de collecter et d’analyser des échantillons pour les aider dans le diagnostic et le suivi de leurs patients. Si vous avez reçu une facture de notre part, c’est probablement parce que nous avons reçu vos coordonnées ainsi qu’un échantillon de votre vétérinaire.
Pour toute question relative aux résultats ou à leur interprétation, veuillez contacter votre vétérinaire.
Si vous avez reçu une facture contenant des données incorrectes ou manquantes, veuillez en informer facturation@zoolyx.be dans les deux mois suivant la date de la facture originale et vous recevrez une version corrigée..
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Het resultaat van een antibiogram bestaat uit een lettercode en vaak ook een getalwaarde afhankelijk van met welke methode het antibiogram bepaald werd.
De lettercode
Dit is de interpretatie die gegeven wordt aan de gemeten zonediameter (diskdiffusiemethode) dan wel de gemeten MIC (microdilutiemethode). Daarnaast wordt ook rekening gehouden met de geïsoleerde bacteriesoort of type, de uitkomst van bijkomende testen (*), de diersoort en de oorsprong van het staal. Er zijn drie mogelijke uitkomsten:
S | Sensible | La souche bactérienne est sensible à l’antibiotique si elle est administrée à la dose prescrite dans la notice. |
---|---|---|
I | Intermédiaire | Cela ne signifie pas que l’antibiotique ne fonctionne pas du tout mais qu’il ne fonctionne pas aussi bien. Cela peut être compensé par un traitement prolongé et/ou un dosage élevé en respectant les exigences de sécurité du fabricant. |
R | Résistent | La souche bactérienne n’est pas sensible à l’antibiotique et est exclue comme choix thérapeutique. |
(*) Parfois, le simple contact de l’isolat avec un antibiotique n’est pas suffisant pour déterminer son efficacité dans le délai de l’essai. Le profil de résistance peut changer lorsque certains facteurs de résistance sont présents et n’entrent en vigueur que plus tard et doivent donc être testés spécifiquement (par ex. ICL et ESBL).
La valeur numérique
Cette valeur ne peut être rapporté qu’à l’aide de la méthode de microdilution. Cette méthode n’est pas disponible pour toutes les combinaisons bactéries-antibiotiques.
Afin de déterminer l’efficacité, la souche bactérienne isolée est suspendue avec une série de dilution de l’antibiotique. La dilution de l’antibiotique la plus elevée (et donc la concentration la plus faible) dans lequel la croissance bactérienne est complètement supprimée est une approche de la concentration minimale inhibitoire (CMI) exprimée en µg/mL.
Cette valeur est à considérer comme une information supplémentaire et dont le code alphabétique est un interprétation.
- Ça donne une idée de la sensibilité (ou résistance) de la bactérie en terme quantitatif.
- Plus la valeur est faible, plus élevée la concentration nécessaire de l’antibiotique pour tuer la bactérie.
- Entre deux dilutions il y a un facteur de 2, la CMI réelle (mesurée sur une échelle continue) est donc entre la dilution rapportée et une étape plus concentrée (moins diluée);
- En théorie, la CMI réflète la concentration tissulaire minimale dans le tissu à traiter. Pour une estimation plus ou moins calculée, il faut des données pharmacocinétiques et dynamiques; sans parler de l’mpact du biofilm et du pus;
- La comparaison des valeurs CMI entre différents antibiotiques n’a aucune signification clinique.
Théoriquement, après 40 cycles, 1 morceau de code génétique était présent au départ de l’analyse a produit 240 ou environ mille milliards (1.099.511.627.776 pour être exact) copies.
Dans le graphique ci-dessous montre l’évolution du cycle (Ct) où il y avait initialement 1, 10, 100, 1.000, 10.000, 100.000 et 1.000.000 particules présentes dans le’échantillon, et ceci quand on met le seuil (threshold) à 1012copies (rouge) ou à 109 copies (orange).
Notez bien que le patient n’est pas analysé en entier, mais qu’un échantillon prélevé, transporté et conservé dans les meilleures conditions en attendant l’analyse.
Tout l’échantillon n’est pas analysé, mais seulement une toute petite fraction. De cette fraction, le matériel génétique est extrait dans son intégralité. Ce pré-traitement n’est pas 100% efficace, une partie est toujours perdue.
Enfin, seule une fraction du matériel génétique extrait est ajoutée aux réactifs (le master mix) pour initialiser la réaction.
Le graphique présume une efficacité de réaction de 100%, chaque cycle conduit exactement à un doublement. En réalité, c’est un peu moins.
En d’autres termes, au cours des manipulations du patient au tube à essai beaucoup de matériel est perdu ou non utilisé. La sensibilité pour détecter 1 à 10 particules n’est pas excessive car 1 particule dans le tube à essai peut signifier un multiple chez le patient.
La question: “Y a-t-il un lien entre la valeur CT et le nombre de particules infectieuses présentes chez le patient?” elle n’est donc pas si simple à répondre. En théorie, on pouvait compter en arrière, mais le résultat dépend fortement de la qualité de l’échantillon, de l’efficacité de l’extraction du matériel génétique et de l’efficacité de la réaction PCR. Aucun de ceux-ci n’est à 100%.
Non.
Une méthode normalisée (c.-à-d. la même méthode d’extraction, les mêmes réactifs, le même cycle de réaction) devrait théoriquement produire environ la même valeur Ct.
Ce n’est presque jamais le cas. Non seulement il y a toujours des différences techniques (autres réactifs, autre équipement, autre protocole d’amplification, autre méthode d’extraction), la valeur Ct est seulement aussi fiable que le prélèvement. Le prélèvement, le transport et la méthode de conservation (la phase pré-analytique) peuvent faire toute la différence.
Un échantillon incorrect ou de moindre qualité obtiendra bien sûr un score plus élevé ou négatif par rapport à un échantillon correctement prélevé. Idem pour un échantillon mal conservé ou agé. Il est souvent difficile d’obtenir un échantillon identique. Deux échantillons de sang prélevés en même temps devraient avoir un contenu identique. De deux écouvillons, c’est beaucoup moins évident. Un peu plus profond, un peu plus à gauche ou à droite peut produire un rendement significativement différent.
En laboratoire on peut comparer les valeurs Ct par example pour évaluer le rendement des méthodes d’extraction differentes, l’efficacité des combinaisons primers-sondes, protocoles PCR, etc.
Si vous soumettez un prélèvement pour analyse en utilisant votre adresse e-mail, un compte sera créé automatiquement. Vous recevrez un message par e-mail pour activer le compte et mettre un mot de passe. Si vous faites cela en tant que vétérinaire, vous aurez un accès immédiat à toutes les fonctions vétérinaires.
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- (vétérinaire seulement) Entrez votre numéro NGROD (nl) ou CRFOMV (fr).
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Vous trouverez les formulaires de demande dans les Outils wikilab.
Egalement les listes de prix y sont disponibles. Ces listes ne sont mises à jour qu’une fois par an, une modification ou une correction provisoire est possible. Vous trouverez le prix le plus récent sur la page wikilab.
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Pour les meilleurs résultats il est recommandé de ne pas nourrir ni abreuver les animaux 30 minutes avant le prélèvement.
- Prennez un animal à la fois.
- Faites tourner l’écouvillon pendant 30 sec sur une place qui se remplit de salive de façon naturelle: la muqueuse de la joue ou sous la langue. Empêchez que l’animal ne morde ou mâche l’éponge.
- Dévissez le bouchon du tube sans renverser le liquide, et mettez le baton dans la tube sans toucher l’extrémité. Puis brisez-le au niveau du point de cassure en pliant puis tournant le baton.
- Jetez la pièce casée. Revissez le bouchon fermement sur le tube, ne pas agiter.
- Collez une étiquette codebar de la micropuce sur le formulaire et marquez le numéro de série ou micropuce sur le tube. Si plusieurs nichées sont prélevées en même temps, marquez égallement la nichée.
- Demandez un assistant de tenir l’animal. La procédure n’est pas douloureuse pour l’animal, mais les animaux anxieux peuvent toujours être effrayés.
- Tournez un doigt autour des quelques poils de la crinière et tirez-le rapidement et puissamment.
- Les racines des poils sont visibles sous forme de points blancs à la base de la tige. Ne touchez pas.
- Mettre les poils dans un sachet plastique avec fermeture zip et sceller.
- Mettez un identifiant sur le sachet.
Pour les meilleurs résultats il est recommandé de ne pas nourrir ni abreuver les animaux 30 minutes avant le prélèvement.
- Désemballez l’écouvillon. Laissez la partie éponge bien attachée au tube.
- Faites tourner l’écouvillon pendant 30 sec sur une place qui se remplit de salive de façon naturelle: la muqueuse de la joue ou sous la langue. Empêchez que l’animal ne morde ou mâche l’éponge.
- Dévissez l’éponge du tube sans renverser le liquide, et vissez la inversement de sorte que l’éponge repose dans le liquide. Serrez bien.
- Retournez le tube 10x, ne pas agiter.
v. auricularis | v. jugularis | v. cephalica | v.femoralis* | v. saphena | v. caudalis | v. cava | |
---|---|---|---|---|---|---|---|
Taille aiguille (G) Volume syringe (mL) |
21-26 1.0-3.0 |
25-27 1.0-3.0 |
25-27 0.5-1.0 |
23-27 1.0-3.0 |
22-30 0.5-1.0 |
22-27 0.3-1.0 |
25-27 1.0-3.0 |
Chinchilla (Chinchilla lanigera) |
+ | + | + | + | +/- | ||
Furet (Mustela putorius furo) |
++ | + | + | ++ | |||
Gerbille (Meriones unguiculatus) |
+ | + (latérale) | |||||
Cochon d’Inde (Cavia porcellus) |
+ | ++ | + | +/- | |||
Hamster | + | + | ++ | + | +/- | ||
Hérisson (Atelerix albiventris) |
+ | + | + | + | +/- | ||
Souris (Mus musculus) |
+ | ++ | + | +(latérale) | |||
Lapin (Oryctolagus cuniculus) |
+ of +/- | ++ | + | ++ | +/- | ||
Rat (Rattus norvegicus) |
+ | + | ++ | + | + (latérale ou dorsale) | +/- | |
Phalanger volant (Petaurus breviceps) |
+ | + | + | + | + (ventraal) | ++ |
* La veine fémorale est préférée, mais au lieu l’artère fémorale peut être utilisée compte tenu de la proximité des deux vaisseaux sanguins.
++ Ces vaisseaux sanguins sont utilisés le plus fréquemment et/ou sont préférés pour des volumes de prélèvement plus importants.
+ Solution intermédiaire, pour usage intermédiaire ou modéré.
+/- A utiliser en dernier recours.
La Société Internationale de Génétique Animale, ISAG en abrégé, définit la méthode et les marqueurs génétiques utilisés au niveau international pour retracer la descendance des animaux.
Pour le chien le profil ADN ISAG compatible contient les marqueurs suivants.
|
||||||||||||||||||||||
(*) optionel(**) marqueur spécifique du sexe
(***) a été supprimé depuis la fin de 2017, et n’est plus pris en compte pour le pedigree. |
Un profil valide
- est clairement lisible, tous les numéros doivent être lisibles sans ambiguïté;
- décrit les allèles des marqueurs sous la forme des nombres (p. ex. 220/224). L’AMELOGENIN peut être rapporté comme X/X soit X/Y (ou Y/X);
- contient si déterminé sur la base de l’ancienne série de 19 marqueurs (dont FH2054) au moins 17 marqueurs (hors FH2054) du panel ISAG;
- contient si déterminé sur la base de la série de 22 (dont FH2054) soit 21 marqueurs (hors FH2054), au moins 20 marqueur (hors FH2054)du panel ISAG.
Dans le passé, certains laboratoires, races (p.ex. le Berger allemand) ou organismes de sélection ont partiellement ou totalement dérogé aux normes. Ces profils ne sont pas utilisables et ne seront pas acceptés. Si le profil ADN de votre chien n’est pas compatible avec les normes ISAG répondant aux exigences ci-dessus, il devra être rétabli.
2 semaines, si un profil ISAG valide est disponible des deux parents.
La procédure peut prendre plus de temps si
- un profil est absent d’un ou des deux parents;
action: vous recevrez un email avec la demande de transmettre un profil ISAG valide. - le prélèvement d’un ou de plusieurs animaux est inadéquat;
action: vous recevrez un nouveau kit de prélèvement accompagné d’une demande de reprélever les animaux en question. Si le nouveau prélèvement s’avère également inadéquat, un échantillon de sang EDTA sera demandé. Aucun kit n’est envoyé pour cela; tout ce qu’il faut fait partie de l’équipement standard de votre vétérinaire.
Si un animal parent est décédé avant qu’un profil ADN ISAG compatible soit établi, il reste deux possibilités.
Il y a encore du matériel disponible.
Le profil ADN peut être établi sur la base de sperme (congelé) ou d’une biopsie.
Des brosses, jouets, colliers et autres objets personnelles, ainsi que du sang ou d’urine NE SONT PAS appropriés. La méthode d’analyse est optimisée pour les types de prélèvement purs. Des prélèvements contaminés nécessitent des techniques médico-légale qui sont beaucoup plus coûteuses sans aucune garantie de résultat.
Aucun échantillon n’est disponible.
Si le corps (ou le sperme) n’est plus disponible, le profil peut être reconstruit sur la base de:
- le profil des DEUX parents de l’animal décédé
- et plusieurs chiots dont l’animal décédé est considéré comme parent
Un profil reconstruit n’est pas toujours complet et contient des incertitudes. Plus de descendants (chiots) impliqués dans la reconstruction, plus le profil est correct et plus sûr la descendance.
Le pedigree est accepté et rapporté comme étant JJJ si les situations suivantes apparaissent dans les 21 marqueurs examinés de la progéniture:
- un pedigree concluant: de tous les marqueurs de la progéniture un allèle se retrouve chez le père et l’autre chez la mère.
p.ex. pedigree concluant - un décalage est accepté: un allèle d’un marqueur ne se retrouve pas chez un des parents.
p.ex. un décalage par rapport au père
Lorsque deux ou plusieurs marqueurs échouent, le pedigree est rejeté et rapporté comme
- JN = le père ne peut être exclu, la mère est exclue
p.ex. 4 marqueurs échouent par rapport à la mère - NJ = le père est exclu , la mère ne peut être exclue
- NN = père et mère sont exclus
Dans le cas aucun autre parent n’est éligible, le profil de l’animal parent présumé peut être rétablis par un nouveau prélèvement pour exclure des erreurs dans son profil initial.
Important: le pedigree se fait pour toute la nichée. Autant qu’un des chiots ne se qualifie pas, le pedigree des autres chiots, même qualifiés, ne sera pas validé.
Pour prouver la descendance, certaines règles doivent être respectées.
Les causes les plus fréquentes d’un rejet (provisoire) sont les suivantes:
- vraiment un autre père ou un double accouplement (certaines races sont notoires pour cela)
- une erreur dans deux ou plusieurs marqueurs du profil d’un ou des deux parents
- des mauvais parent(s) spécifié lors de la déclaration de la nichée
- le profil d’un ou des deux parents n’est pas ISAG compatible
- en cas de nichées simultanées, les chiots qui ont rampé dans une autre nichée
- en cas de prélèvement de nichées multiples en même temps, intervertissement d’un chiot d’une portée à l’autre
Le sexe sur le certificat est déterminé par le marqueur AMELOGENIN.
Sexe | En lettre | En chiffre |
---|---|---|
Mâle | X/Y of Y/X | 182/217 |
Femelle | X/X | 217/217 |
Le sexe transmis à la déclaration n’est pas pris en compte. L’ADN présent dans le tube d’une part et le numéro de puce (ou autre identification) sur le même tube d’autre part sont inextricablement liés. Lorsqu’il s’écarte du vrai sexe, un échange lors du prélèvement ou de la réception des prélèvements est à exclure.
Et maintenant?
Tout d’abord, les données d’analyse brutes seront revues pour voir si les signaux ont bien été interprétés. Le cas échéant, bien sûr, il sera corrigé sans frais supplémentaires.
Dans le cas d’un échange non seulement le sexe est faux mais le profil entier. Le mauvais animal était après tout lié au mauvais tube.
Nous vérifions l’identification des tubes d’origine et les échantillons sont analysés à nouveau. Après il reste deux possibilités:
-
- La réanalyse entraîne un autre profil (et sexe). L’erreur s’est produite avec la réception des échantillons. Elle est corrigée sans frais supplémentaires.
- La réanalyse entraîne un même profil (et sexe). L’erreur s’est produite pendant le prélèvement. Elle ne peut pas être corrigée sans un nouveau prélèvement à ses frais.
Pour des raisons de confidentialité et de déontologie, les rapports d’analyse sont uniquement envoyés à:
- le vétérinaire demandeur ou l’expéditeur des échantillons
- le propriétaire de l’animal au moment de la demande
- toutes adresses e-mail en cc au moment de la demande
Une tierce partie non impliquée dans la demande initiale ne peut pas recevoir une copie en direct, mais seulement par l’intermédiaire du vétérinaire ou du propriétaire d’origine.
En tout cas nous conserveront le droit de demander le paiement préalable des analyses effectuées ou à effectuer.